Гипергидроз: физиология, диагностика, лечение

Еще по теме

Сочетанные методики
Гель на основе плазмы с низким содержанием тромбоцитов оказался эффективен против растяжек

Сочетанные методики
Сочетанные протоколы применения биостимулятора кожи на основе поли-Л-молочной кислоты и аппаратных технологий

Сочетанные методики
Март. Приветственное слово главного редактора
Нерегулярность слов стала моей визитной карточкой как главного редактора Портала. У этого есть много…

Сочетанные методики
Лифтинг или тонус кожи: зачем выбирать?
Рассказываем о комбинации аминокислотной заместительной терапии и лифтинга кожи в составе комплексно…

Особенности механизма

В литературе встречаются разные трактовки уравнения нингидриновой реакции. Какие-то исследователи опускают образование гидриндантина из 2-аминоинандиона, который при участии аммиака и нингидрина также образует красящее вещество под названием «пурпурный Руэмана» (или «синий Руэмана»), а другие, наоборот, предполагают только его участие без присутствия промежуточных аминопродуктов. В записи самой реакции также есть некоторые интересные моменты, в особенности это касается способов присоединения аминопроизводного нингидрина к основной его молекуле с образованием красителя. Также остается под вопросом указание места «гулящего водорода», полученного промежуточным амином из водной среды: оно может быть или в кетоновой группе, или рядом с –NH₂.

В действительности нюанс с атомом H незначителен, так как его положение в соединении не играет особой роли в ходе реакции, поэтому на него не следует обращать внимание. Что касается пропуска одной из возможных стадий, то здесь причина кроется в теоретическом аспекте: до сих пор точный механизм образования пурпурного Руэмана точно не определен, поэтому можно встретить довольно разные схемы нингидриновой реакции

Ниже будет предложен наиболее полный возможный ход взаимодействия реактива с аминосоединениями.

Нарушения потоотделения. Гипергидроз

Расстройства потоотделения можно делить на количественные и качественные (встречаются крайне редко).

Качественные:

• изменение цвета пота отмечается при попадании в организм человека солей железа, кобальта, меди, йодида калия;
• при хроническом нефрите, уремии иногда отмечается уридроз – выделение мочевины и мочевой кислоты на волосах и в подмышечной впадине в виде мельчайших кристаллов;
• стеатгидроз — наблюдается при значительной примеси секрета сальных желез, вследствие чего пот становится жирным.

Количественные:

• утрата потоотделения – ангидроз;
• снижение интенсивности потоотделения – гипогидроз;
• повышение потоотделения – гипергидроз.

Ангидроз — значительное уменьшение или полное отсутствие потоотделения. Возникает при недоразвитии потовых желез, например, при ангидротической эктодермальной дисплазии, а так же может иметь атрофическую, травматическую, токсическую и неврологическую природу.

Гипогидроз – снижение потоотделения, может возникнуть вследствие атрофии потовых желез, например, при травме или воспалении, а также при применении некоторых групп лекарственных препаратов.

На практике чаще встречается повышенное потоотделение или гипергидроз.

Гипергидроз — это нарушение работы потовых желез, при котором увеличивается продукция пота.

В зависимости от степени распространения гипергидроз может быть локальным (на определенном участке) или генерализованым (по всему телу).

Генерализованный гипергидроз:

• эссенциальный или идиопатический;
• при наследственных заболеваниях: синдром Райли-Дея (семейная дизавтономия), синдром Бука, синдром Гамсторп-Вольфарта;
• при приобретенных заболеваниях: ожирении, гипертиреозе, акромегалии, феохромоцитоме, алкоголизме, хронических инфекциях (туберкулез, бруцеллез, малярия), неврозах, лекарственных реакциях вследствие приема антихолинэстеразных средств.

Локальный гипергидроз:

• лицевой: аурикулотемпоральный синдром Люси Фрей, синдром барабанной струны, сирингомиелия, красный гранулез носа, синий губчатый невус;
• ладонный и стопный: синдром Брюнауэра, пахионихия, патология периферических вен, полиневропатии, эритромелалгия, акроасфиксия Кассирера;
• аксиллярный наследственный гипергидроз.

К врачам-косметологам обычно обращаются пациенты с эссенциальным гипергидрозом, который носит генерализованный характер, но с преобладанием в какой-то одной, реже нескольких зонах. Самая распространенная проблема – это аксиллярный, или подмышечный, гипергидроз, далее по частоте обращения — ладонный и подошвенный, реже — фациальный.

Нингидрин в судебной медицине

Нингидрин и Амидо Блэк используются для защиты отпечатков пальцев. Связанная патент был применен на 27 сентября 1954 года в Соединенных Штатах по Сванте Оден , (родился 29 апреля 1924 года в Стокгольме , † декларация о смерти после исчезновения, профессор почвоведения). Он получил известность благодаря открытию подкисления почв за счет атмосферных осадков и анализу тяжелых металлов в осадке сточных вод муниципальных очистных сооружений. С тех пор нингидриновое исследование абсорбирующих следов носителей, помимо использования порошка сажи и цианоакрилата, стало одним из трех основных методов в лабораториях судебной экспертизы и обычно используется следующим образом:

Нингидрин: 2 г нингидрина растворяют в 100 мл этанола . Раствор подкисляют примерно 0,5 г 20% уксусной кислоты и затем распыляют на отпечаток пальца с помощью распылителя. Чтобы усилить впечатление, его выдерживают несколько минут над паром. Нингидрин вступает в реакцию с аминокислотами и белками пота и образует пурпурное соединение сложной структуры.

NFN (Неогнеопасен нингидрин): Неогнеопасны нингидрина раствор вызывает химическую реакцию с некоторыми веществами на дактилоскопическом следе. Хорошо работает с писчей бумагой, газетами и картоном; не подходит для художественной печати, глянцевой и фотобумаги. Носитель следа окунается в раствор (продолжительность зависит от толщины материала) или смачивается ватным тампоном. После высыхания на воздухе хранится в темноте. На проявление следов требуется от 30 минут до 72 часов; в экстренных случаях его можно ускорить, приложив тепло. Носители следов, обработанные нингидрином, должны быть немедленно помещены в герметичную пластмассовую крышку, так как повторное прикосновение к ним приведет к появлению новых следов; Кроме того, могут образовываться вредные пары или пыль. Доказательства получены с помощью фотографии.

НПБ (нингидрин нефтяной бензин): раствор вызывает химическую реакцию с некоторыми компонентами дактилоскопического следа. Вредные компоненты NFN ( трихлортрифторэтан и уксусная кислота ) были заменены нефтяным бензином , но образующаяся паровая смесь является взрывоопасной. Электрические системы и устройства в рабочей зоне должны быть взрывозащищенными. NPB хорошо работает с писчей бумагой, газетами и картоном; однако его нельзя использовать с художественной бумагой, глянцевой бумагой и фотобумагой. Обработка осуществляется так же, как и с NFN.

Тетра-НПБ (Тетра Нингидрин Петролеум Бензин): раствор вызывает химическую реакцию с некоторыми компонентами дактилоскопического следа. Он хорошо подходит для скрытых следов, вызванных кровью или кровяной водой (процедура не влияет на анализ крови). Смесь переливают в банку до образования двух слоев. Верхняя светлая жидкость сливается (должна быть утилизирована), нижняя коричневая жидкость заливается в распылитель. Криминалистические доказательства хранятся в оригинале (со следовым носителем) или фотографически.

Нингидрин — ацетон: раствор вызывает химическую реакцию с некоторыми компонентами дактилоскопического следа. Хорошо подходит для писчей бумаги, газет и картона; его нельзя использовать для художественной печати, глянцевой или фотобумаги. Ацетон растворяет почти все красители для шрифтов, штампы и т. Д. Следовательно, этот метод можно использовать только в том случае, если можно обойтись без изучения этих типов следов. Поиск зацепок осуществляется так же, как и с NFN.

Sirchie — Onprint: спрей для печати — это промышленный продукт, который содержит вещества, похожие на NFN. Хорошо работает на писчей бумаге, газетах и ​​картоне; его нельзя использовать с художественной бумагой, глянцевой бумагой и фотобумагой. Носитель следов распыляется с расстояния 30 см и сушится на воздухе. При хранении в темноте следы проявляются независимо от времени примерно от 30 минут до 72 часов.

ЦВЕТНЫЕ И ИМЕННЫЕ КАЧЕСТВЕННЫЕ РЕАКЦИИ НА БЕЛКИ

История химии в школьном курсе

РЕАКЦИЯ ПИОТРОВСКОГО (БИУРЕТОВАЯ РЕАКЦИЯ)

В белках аминокислоты связаны друг с другом по типу полипептидов и дикетопиперазинов. Образование полипептидов из аминокислот происходит путем отщепления молекулы воды от аминогруппы одной молекулы аминокислоты и карбоксильной группы другой молекулы:

Образующаяся группа –С(О)–NН– называется пептидной группой, связь С–N, соединяющая остатки млекул аминокислот, – пептидной связью.

При взаимодействии дипептида с новой молекулой аминокислоты получается трипептид и т. д.

Дикетопиперазины образуются при взаимодействии двух молекул аминокислот с отщеплением двух молекул воды:

Дикетопиперазины были выделены из белков Н.Д.Зелинским и В.С.Садиковым в 1923 г.

Наличие в белке повторяющихся пептидных групп подтверждается тем, что белки дают фиолетовое окрашивание при действии небольшого количества раствора медного купороса в присутствии щелочи (биуретовая реакция).

Описание опыта.

2–3 мл раствора белка нагревают с 2–3 мл 20%-го раствора едкого кали или натра и несколькими каплями раствора медного купороса. Появляется фиолетовое окрашивание вследствие образования комплексных соединений меди с белками.

РЕАКЦИЯ РУЭМАННА (НИНГИДРИНОВАЯ РЕАКЦИЯ (1911))

a-Аминокислоты реагируют с нингидрином, образуя сине-фиолетовый комплекс (пурпур Руэманна), интенсивность окраски которого пропорциональна количеству аминокислоты.

Реакция идет по схеме:

Реакция с нингидрином используется для визуального обнаружения a-аминокислот на хроматограммах (на бумаге, в тонком слое), а также для колориметрического определения концентрации аминокислот по интенсивности окраски продукта реакции.

Описание опыта.

В пробирку наливают 1 мл 1%-го раствора глицина и 0,5 мл 1%-го раствора нингидрина

Содержимое пробирки осторожно нагревают до появления сине-фиолетового окрашивания

Эта реакция на аминокислоту аргинин основана на взаимодействии аргинина с a-нафтолом в присутствии окислителя. Ее механизм еще полностью не выяснен. По-видимому, реакция осуществляется по следующему уравнению:

Поскольку производные хинониминов (в данном случае нафтохинона), у которых водород иминогруппы –NH– замещен на алкильный или арильный радикал, всегда окрашены в желто-красные тона, то, по-видимому, оранжево-красный цвет раствора при проведении реакции Сакагучи объясняется возникновением именно производного нафтохинонимина.

Не исключена, однако, вероятность образования еще более сложного соединения за счет дальнейшего окисления оставшихся NH-групп аргининового остатка и бензольного ядра a-нафтола:

Описание опыта.

В пробирку наливают 2 мл 0,01%-го раствора аргинина, затем добавляют 2 мл 10%-го раствора едкого натра и несколько капель 0,2% спиртового раствора a-нафтола.

Методы диагностики гипергидроза

Для диагностики гипергидроза существуют несколько методик.

При визуальном осмотре можно, используя внешние оценочные критерии, приблизительно определить степень выраженности проблемы. К внешним критериям, например, можно отнести размер мокрого пятна на одежде в подмышечной области, где до 5 см — это вариант нормы, от 5 см до 10 см – легкая степень, от 10см до 20см — средне-тяжелая и более 20 см — тяжелая степень.

Количественные методы диагностики гипергидроза

Существуют также 2 количественных метода диагностики гипергидроза – это гравиметрия и эвапометрия.

Метод гравиметрии подходит для оценки подмышечного, ладонного и подошвенного гипергидрозов. После высушивания исследуемой поверхности к ней прикладывают заранее взвешенный листок фильтровальной бумаги и оставляют на строго определенное время. После этого бумагу взвешивают. Полученную скорость потоотделения выражают мг/мин.

Для мужчин и женщин показатели отличаются. При исследовании подмышечных областей у мужчин норма составляет 14,4 мг/мин, а гипергидроз — 20 мг/мин и больше, у женщин: норма — 9,4 мг/мин, гипергидроз — более 10 мг/мин. Поскольку метод достаточно сложен и затратен, в практике косметолога он не применяется, и имеет большое значение при проведении клинических исследований.

Эвапометрия – метод, при котором с помощью приборов оценивают скорость трансэпидермальной потери влаги (ТЭПВ). Существует ряд аппаратов, способных рассчитать ТЭПВ, и лишь некоторые из них имеют необходимые сертификаты и регистрационные удостоверения. Например, система TEST CENTERS MC 1000, производства Германии: аппарат способен просчитать около 10 различных показателей кожи. Минус таких исследований в их дороговизне.

Качественные методы оценки гипергидроза

Проба Минора (йодисто-крахмальный тест): метод основан на окрашивании крахмала при выделении пота на коже, обработанной йодом. Во время пробы на кожу исследуемой зоны наносят двухпроцентный раствор йода, дают ему высохнуть, после чего мягкой кисточкой распыляют крахмал. При выделении капель пота слегка коричневая окраска кожи, покрытой йодом, меняется на пурпурную. Участок исследования фотографируют, замеряют линейкой, а данные заносят в карту пациента. Метод не используется для количественной оценки потоотделения, но он хорошо подходит для определения площади потоотделения. Эти данные могут быть использованы для последующего лечения и сравнения результатов после лечения.

Нингидриновый тест — второй качественный метод оценки гипергидроза. Подходит для оценки ладонного и подошвенного гипергидрозов. Пробу проводят следующим образом: к обыкновенному листу бумаги прикладывают исследуемую зону, например, подушечки пальцев кисти, затем бумагу погружают в 1% раствор нингидрида в ацетоне и после высушивают при комнатной температуре. В течение нескольких часов или дней на бумаге появляются черные точки, которые представляют собой аминокислоты пота, связанные с нингидрином. Для сохранения данных на долгое время их можно зафиксировать в растворе нитрата меди в ацетоне. Минусы метода — в сложности, затратности и длительности выполнения данного теста.

характеристики

Нингидрин реагирует с аминогруппой из аминокислот с отщеплением воды с образованием основания Шифф ( имин ). После декарбоксилирования в карбоксильной группе аминокислоты и последующего отщепление остатка аминокислоты, образуются амин-нингидрин. Он димеризуется с нингидрином до фиолетового красителя (пурпурный Рухемана). Интенсивный фиолетовый цвет можно объяснить мезомерией с участием водородной связи в системе сопряженных двойных связей.

Интенсивность цвета пропорциональна концентрации красителя (см. Закон Ламберта-Бера ) и, следовательно, концентрации аминокислоты, которую необходимо определить. Для количественного анализа , несколько образцов с известной концентрацией сравнивают фотометрически при 570  нм , как стандарты с образцом, подлежащих рассмотрению. При взаимодействии с вторичными аминокислотами, такими как пролин или гидроксипролин , образуется комплекс желтого цвета, который можно измерить фотометрически при 400 нм.

Нингидрин также важен для контроля оборота в твердофазном синтезе пептидов (SPPS) и в органическом твердофазном синтезе (SPOS) и является компонентом теста Кайзера .

Реакция относительно чувствительна, предел обнаружения составляет от 0,001 до 0,1 мг.

Реакция с аминогруппой

Так как проба не специфична, визуальное обнаружение аланина с помощью нингидриновой реакции в смеси не представляется возможным. Однако методом бумажной хроматографии, при нанесении образцов различных α-аминокислот, их опрыскивании водным раствором нингидрина и проявлением в специальной среде, можно рассчитать количественный состав не только заявленного соединения, но и многих других.

Схематично взаимодействие аланина с нингидрином проходит по тому же принципу. Он присоединяется к реактиву по аминовой группе, а под действием активных ионов гидроксония (H₃O+) отщепляется по месту связи углерода с азотом, распадаясь на уксусный альдегид (CH₃COH) и углекислый газ (CO₂). Другая молекула нингидрина присоединяется к азоту, вытесняя молекулы воды, и образуется красящая структура (рис. 4).

Качественные реакции на аминокислоты, пептиды, белки

Аминокислоты можно обнаружить с помощью цветных реакций: нингидриновой, ксантопротеиновой, Фоля, Милона, биуретовой пробы и др.

Эти реакции неспецифичны, т.к. основаны на обнаружении отдельных фрагментов в структуре аминокислот, которые могут встречаться и в других соединениях.

Нингидриновая реакция, цветная реакция, применяемая для качественного и количественного определения аминокислот, иминокислот и аминов. При нагревании в щелочной среде нингидрина (трикетогидринденгидрата, С9НбО4) с веществами, имеющими первичные аминогруппы (—NH2), образуется продукт, который имеет устойчивую интенсивную сине-фиолетовую окраску с максимальным поглощением около 570 нм.

Т. к. поглощение при этой длине волны линейно зависит от числа свободных аминогрупп, нингидриновая реакция послужила основой для их количественного определения методами колориметрии или спектрофотометрии. Эта реакция используется также для определения вторичных аминогрупп (>NH) в иминокислотах — пролине и оксипролине; в этом случае образуется продукт ярко-жёлтого цвета.

Чувствительность — до 0,01%. Современный автоматический аминокислотный анализ проводят, сочетая ионообменное разделение аминокислот и количественное определение их с помощью нингидриновой реакции.

При разделении смесей аминокислот методом бумажной хроматографии позволяет определять каждую аминокислоту в количестве не менее 2—5 мкг.

По интенсивности окраски можно судить о количестве аминокислот.

Эта реакция положительна не только со свободными аминокислотами, но и пептидами, белками и др.

Ксантопротеиновая реакция позволяет обнаружить ароматические аминокислоты (фенилаланин, тирозин, гистидин, триптофан), основана на реакции электрофильного замещения в ароматическом ядре (нитрование).

При действии концентрированной азотной кислоты, например, на тирозин образуется продукт, окрашенный в желтый цвет.

Реакция Фоля. Это реакция на цистеин и цистин.

При щелочном гидролизе «слабосвязанная сера» в цистеине и цистине достаточно легко отщепляется, в результате чего образуется сероводород, который, реагируя со щелочью, дает сульфиды натрия или калия. При добавлении ацетата свинца(II) образуется осадок сульфида свинца(II) серо-черного цвета.

Описание опыта. В пробирку наливают 1 мл раствора цистина, прибавляют 0,5 мл 20%-го раствора гидроксида натрия.

Смесь нагревают до кипения, а затем добавляют 0,5 мл раствора ацетата свинца(II). Наблюдается выпадение серо-черного осадка сульфида свинца(II):

Реакция Циммермана. Это реакция на аминокислоту глицин.

Описание опыта. К 2 мл 0,1%-го раствора глицина, доведенного добавлением 10%-го раствора щелочи до рН = 8, приливают 0,5 мл водного раствора о-фталевого диальдегида.

Реакционная смесь начинает медленно окрашиваться в ярко-зеленый цвет. Через несколько минут выпадает зеленый осадок.

Реакция на триптофан. Триптофан, реагируя в кислой среде с альдегидами, образует окрашенные продукты конденсации. Например, с глиоксиловой кислотой (являющейся примесью к концентрированной уксусной кислоте) реакция протекает по уравнению:

По аналогичной схеме протекает и реакция триптофана с формальдегидом.

Реакция Сакагучи. Эта реакция на аминокислоту аргинин основана на взаимодействии аргинина с α-нафтолом в присутствии окислителя.

Ее механизм еще полностью не выяснен. По-видимому, реакция осуществляется по следующему уравнению:

Поскольку производные хинониминов (в данном случае нафтохинона), у которых водород иминогруппы –NH– замещен на алкильный или арильный радикал, всегда окрашены в желто-красные тона, то, по-видимому, оранжево-красный цвет раствора при проведении реакции Сакагучи объясняется возникновением именно производного нафтохинонимина.

Не исключена, однако, вероятность образования еще более сложного соединения за счет дальнейшего окисления оставшихся NH-групп аргининового остатка и бензольного ядра α-нафтола:

Описание опыта.

В пробирку наливают 2 мл 0,01%-го раствора аргинина, затем добавляют 2 мл 10%-го раствора едкого натра и несколько капель 0,2% спиртового раствора α-нафтола. Содержимое пробирки хорошо перемешивают, приливают 0,5 мл раствора гипобромита и вновь перемешивают. Немедленно добавляют 1 мл 40%-го раствора мочевины для стабилизации быстро развивающегося оранжево-красного окрашивания.

Биуретовая реакция – используется как цветная реакция на белки. В щелочной среде в присутствии солей меди(II) они дают фиолетовое окрашивание.

Окраска обусловлена образованием комплексного соединения меди(II), за счет пептидной группы -СО-NH- , которая характерна для белков.

Потоотделение как защитная реакция

Потоотделение – это физиологический процесс, присущий некоторым видам млекопитающих и человеку и сопровождающийся выделением на поверхность тела пота — продукта деятельности потовых желез. Выделение пота – это нормальная функция человеческого организма, она необходимая для терморегуляции, поддержания водно-солевого баланса, регуляции обмена веществ и вывода токсинов.

Контроль терморегуляции необходим для поддержания нормальной температуры тела при ее понижении или повышении, осуществляется посредством теплопродукции или теплоотдачи, соответственно. Теплоотдача запускается при повышении температуры тела. Это может происходить по ряду причин, например, при физической нагрузке, при повышении температуры воздуха, во время эмоционального напряжения или стресса, при употреблении горячей пищи или напитков. Тело охлаждается при испарении с его поверхности пота. Поскольку переход жидкости в газообразное состояние — это энергозатратный процесс, «лишняя» энергия при этом расходуется.

Пот образуется непрерывно. Даже в покое и при низкой температуре воздуха за сутки выделяется 500-700 мл пота. В условиях тропического климата потоотделение достигает 5-12 л в день. У женщин потоотделение ниже, чем у мужчин, это связано с различиями в процессе эволюции обоих полов. На ранних этапах развития человечества основной деятельностью мужчин была охота, которая требовала большей физической активности, и как следствие, более быстрой потери лишнего тепла. Именно поэтому мужчины стали потеть больше и быстрее. Второй причиной повышенного потоотделения у мужчин, возможно, является фактор массы тела – мужчины крупнее женщин, соответственно, в них больше воды.

Пот на 98-99% состоит из воды, что очень близко к плазме крови, а также мочевины (около 0,1%), мочевой кислоты, креатинина, серина, жиров, летучих жирных кислот, мыла, холестерина, солей щелочных металлов (преобладает NaCl — 0,3%), парных эфиро-серных кислот и ароматических оксикислот.

Биуретовая проба и другие реакции на белки

Качественный анализ на пептидные связи даже непротеиновых структур может проходить не только с участием вышеописанного реактива. Однако в случае нингидриновой реакции на белки взаимодействие идет не по –CO-NH‒ группам, а по аминовым. Существует так называемая «биуретовая реакция», которая характеризуется добавлением в раствор с аминосоединениями ионов двухвалентной меди из CuSO₄ или Cu(OH)₂ в щелочной среде (рис. 3).

В ходе анализа при наличии необходимых структур раствор окрашивается в темно-синий цвет благодаря связыванию пептидных связей в цветной комплекс, что отличает один реактив от другого. Вот почему биуретовая и нингидриновая реакции являются универсальными по отношению к белковым и небелковым структурам с группой –CO-NH‒.

При определении циклических аминокислот используют ксантопротеиновую реакцию с концентрированным раствором азотной кислоты HNO₃ , которая при нитровании дает желтую окраску. Капля реактива, попавшая на кожу, также проявляет желтую окраску, реагируя с аминокислотами в клетках кожи. Азотная кислота может оставлять ожоги, поэтому с ней также следует работать в перчатках.

использовать

Нингидрин в основном используется для обнаружения аминокислот и белков . Однако для белков тест успешен только в том случае, если присутствуют относительно короткие олигопептиды, поскольку нингидрин реагирует только со свободными аминогруппами, а они почти не присутствуют в длинноцепочечных полипептидах. Обнаружение проводится в растворе (при нагревании на водяной бане). Нингидрин часто используется в качестве реагента для спрея z. Б. используется в бумажной или тонкослойной хроматографии .

Еще одно приложение, основанное на этой реакции, — создание отпечатков пальцев . Поскольку аминокислоты содержатся в поте , они могут вступать в реакцию с нингидрином и делать видимыми отпечатки пальцев и рук.

Этот механизм также используется в медицине как так называемая проба Моберга для обнаружения поражений периферических нервов. Поскольку симпатические волокна, регулирующие секрецию пота, проходят вместе с периферическими нервными путями от выхода из спинного мозга, секреция пота также нарушается, что может быть продемонстрировано на снимке кожи с помощью нингидрина.

Исключением является аминокислота пролин или гидроксипролин , которые в качестве вторичных аминокислот имеют вторичную (NH) аминогруппу вместо первичной (NH ₂ ) . Пролин и гидроксипролин реагируют по другому механизму реакции с образованием желто-красного продукта с максимумом поглощения при 400  нм . При реакции с первичной аминокислотой, которая имеет группу NH ₂ , имеет максимум поглощения 570 нм и реагирует на фиолетовый краситель, называемый пурпуром Рухемана.

Две молекулы нингидрина реагируют в щелочной среде с короткими олигопептидами с образованием фиолетового красителя, пурпурного Рухемана.

Применение БТА для лечения проявления гипергидроза

Последний в списке, но не последний по значимости, – это относительно простой, но эффективный инъекционный метод, в настоящее время применяемый чаще всего. Метод основан на микро-инъекционном введении в проблемную зону препарата, в основе которого лежит ботулотоксин типа А.

Впервые с целью лечения гипергидроза ботулотоксин использовали в 1996 году (Bushara, et al., 1996) путем проведения подкожных инъекций по поводу аксиллярного и пальмарного гипергидроза. Препараты БТА, используемые для лечения гипергидроза: Ботокс, Диспорт, Ксеоиин, Релатокс.

Выбор препарата делает специалист (врач) в соответствии со своей квалификацией и личными предпочтениями.

Процедура лечения гипергидроза начинается с опроса и осмотра пациента, заполнения карты и информированного согласия, проведения оценочных тестов, исходя из оснащения медцентра. Чаще бывает достаточно пробы Минора — для определения поля воздействия. Перед процедурой необходимо исключить применение дезодорантов на основе спирта.

Если необходимо, для облегчения неприятных ощущений, связанных с инъекциями, наносят топические анестетики. Препарат для введения разводят 0,9% натрием хлоридом (физ. раствором). Доза физ. раствора, как и доза, необходимая для инъекции, зависит от выбранного препарата и рекомендаций фирмы-производителя.

Однако отмечается значительная связь длительности эффекта и объема вводимых единиц: чем больше единиц вводится, тем выше и длительнее эффект. Максимальное количество единиц препарата в одну зону также устанавливается фирмой-производителем.

Реабилитация, как правило, отсутствует. Микротравмы после инъекции заживают в течение первых суток, синяки и гематомы — в течение 5-7 дней.

Ботулинотерапия для лечения гипергидроза ладоней и подошв применяется реже, это, в первую очередь, связано с высокой степенью болезненности, т.к. топические анестетики в этих областях малоэффективны. Однако существует метод проводниковой анастезии (срединного, лучевого и локтевого нервов), потенциальным осложнением которой может быть переходящая слабость пальцев кистей рук.

Проводниковая анастезия при подошвенном гипергидрозе осуществляется через задний тибиальный и суральный нервы.